全部評論(1條)
-
- 漢共操耗侄障說 2017-04-10 00:00:00
- 大家幫忙看看DNA擴增后電泳為什么是這樣子 縮短暴光時間本來就使帶變暗,如果再進一步縮短暴光時間,可能其他的帶也不清楚了。還是考慮電泳體系的問題: 1.首先考慮是你的電壓可能有點高,降低電壓后適當延長時間可以改善。 2.膠灌的如何,MARKER好象有點變形 3.加樣問題 建議用本次的樣品重新跑個看看,排除一下電泳體系的問題。 相關熱詞:電泳結果圖 擴增產物 目的基因 RT-PCR 基因 云霧狀 電泳圖 .......... 相關文章 1.請幫分析RT-PCR電泳結果圖(RT-PCR,電泳結果圖,擴增產物,目的基因) 2.請大家幫忙看張PCR電泳結果圖,謝謝!(電泳結果圖|內參) 3.誘變引物是什么啊(引物,誘變,基因,反應體系) 4.擴增產物大小不對的問題(擴增產物,細胞株,條帶) 5.三段PCR擴增產物酶切后直接連接,可行嗎(酶切,擴增產物,載體) 6.熒光定量PCR的擴增產物長度為何不能太長(擴增產物,熒光定量) 7.求RealTime PCR 內參引物序列GAPDH或Actin(內參引物序列,擴增曲線,溶解曲線,引物序列) 8.RT-QPCR大家都用什么做標準曲線(標準曲線,擴增效率,標準品,反轉錄) 9.pcr-sscp法(pcr-sscp,凝膠,單鏈,玻璃) 10.【心得】Primer3中幾個參數設置問題(參數設置,引物,互補性,設計引物)
-
贊(9)
回復(0)
熱門問答
- 大家幫忙看看DNA擴增后電泳為什么是這樣子
2017-04-09 20:29:48
560
1
- DNA經pcr擴增后電泳出現了三條帶是怎么回事?
- 確定沒有出現引物二聚體,更不是rna跑的
2009-03-31 02:27:02
583
3
- 大家幫忙看看細胞有沒有被污染
2017-07-11 11:43:56
327
1
- 轉基因的提取的dna經過pcr擴增后電泳顏色深淺不一是為什么
2015-04-23 05:28:25
461
1
- dna電泳檢測某擴增產物條帶過多,原因
- dna電泳檢測某擴增產物條帶過多,原因
2016-04-10 18:25:28
418
1
- DNA 的PCR擴增后電泳出來的結果怎么是這樣的?。磕睦锍隽藛栴}呢?
2015-07-30 15:25:39
425
1
- 提取DNA跑電泳完后DNA條帶好不好怎么看
2016-08-21 14:33:55
363
1
- pcr技術能使整個加入體系dna片段呈指數擴增。為什么這句話是錯的?
2016-02-01 13:48:51
389
2
- pcr技術擴增dna片段中為什么要在Z后延伸10分鐘
2015-12-30 14:41:55
637
1
- 蛋白與dna交聯后怎樣進行電泳
2017-04-26 01:58:11
390
1
- 怎樣算PCR擴增后的DNA質量
2017-02-26 05:55:37
379
1
- 大家幫忙看看,空空調右側黑乎乎的是什么,怎么修,謝謝!
2016-07-22 18:35:29
539
1
- PCR過程中為什么要擴增DNA片段
2010-06-02 01:50:56
492
3
- 產前基因診斷為什么要擴增DNA
2017-01-21 03:08:44
721
1
- 為什么選擇性擴增后dna片段在不與其dna整合情況下不能復制和轉錄
2011-07-31 09:31:05
435
3
- 用icl8038做正弦波信號發生器大家幫忙看看這個電路圖能實現嗎
- 另外邊那部分是干什么用的啊... 另外邊那部分是干什么用的啊 展開
2018-11-22 00:56:10
234
0
- 為什么我這氣泡吹膜機吹出來的膜老是會這樣子怎么回事
2018-11-11 19:53:26
355
0
- PCR擴增得到的DNA序列長度是為什么固定的
2016-03-14 22:54:03
450
1
- PCR擴增得到的DNA序列長度是為什么固定的?
2012-05-22 03:01:09
565
4
- DNA電泳常見問題分析
一、DNA帶模糊
原因:
1.DNA降解;
2.電泳緩沖液陳舊;
3.所用電泳條件不合適;
4.DNA上樣量過多;
5.DNA樣含鹽過高;
6.有蛋白污染;
7.DNA變性。
解決辦法:
1.避免核酸酶污染;
2.電泳緩沖液多次使用后,離子強度降低,pH值上升,緩沖能力減弱,從而影響電泳效果。建議經常更換電泳緩沖液;
3.電泳時電壓不應超過20V/cm,溫度<30℃;巨大DNA鏈電泳,溫度應<15℃;核查所用電泳緩沖液是否有足夠的緩沖能力;
4.減少凝膠中DNA上樣量;
5.電泳前通過乙醇沉淀去除過多的鹽;
6.電泳前酚抽提去除蛋白;
7.電泳前勿加熱,用20mM NaCI緩沖液稀釋DNA。
二、帶弱或無DNA帶
原因:
1.DNA的上樣量不夠;
2.DNA降解;
3.DNA走出凝膠;
4.對于EB染色的DNA,所用光源不合適。
解決辦法:
1.增加DNA的上樣量;聚丙烯酰胺凝膠電泳比瓊脂糖電泳靈敏度稍高,上樣量可適當降低;
2.避免DNA的核酸酶污染;
3.縮短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度;
4.應用短波長(254nm)的紫外光源。
三、DNA帶缺失
原因:
1.小DNA帶走出凝膠;
2.分子大小相近的DNA帶不易分辨;
3.DNA 變性;
4.DNA鏈巨大,常規凝膠電泳不合適。
解決辦法:
1.縮短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度;
2.增加電泳時間,核準正確的凝膠濃度;
3.電泳前請勿高溫加熱DNA鏈,以20mM NaCl Buffer稀釋DNA;
4.在脈沖凝膠電泳上分析。
2020-09-02 16:49:09
1086
0
5月突出貢獻榜
推薦主頁
最新話題
-
- #DeepSeek如何看待儀器#
- 干體爐技術發展與應用研究
- 從-70℃到150℃:一臺試驗箱如何終結智能...從-70℃到150℃:一臺試驗箱如何終結智能調光膜失效風險?解決方案:SMC-210PF-FPC溫濕度折彎試驗箱的五大核心價值1. 多維度環境模擬,覆蓋全生命周期測試需求超寬溫域:支持-70℃至+150℃的極限溫度模擬(可選配),復現材料在極寒、高溫、冷熱沖擊下的性能表現;控濕:濕度范圍20%~98%RH(精度±3%RH),模擬熱帶雨林、沙漠干燥等復雜工況,暴露材料吸濕膨脹、分層缺陷;動態折彎:0°~180°連續可調折彎角度,支持R1~R20彎曲半徑設定,模擬實際裝配中的微小應力,提前預警裂紋、斷裂風險。
參與評論
登錄后參與評論