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動物足底熱刺痛儀

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產品特點

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詳細介紹

中國區總代理,高精度、自動化的疼痛感覺評估工具,專為小動物實驗設計。利用熱刺激技術,在大小鼠足底施加可控溫度的熱刺激,通過記錄抬足潛伏期量化疼痛感知閾值,為疼痛模型建立、藥物鎮痛效果評估及神經病理痛機制研究提供客觀、量化的數據支持。足底熱刺痛主要通過Hargreaves檢測動物縮足潛伏期PWL


疼痛甩尾和冷熱板實驗雖是急性疼痛熱閾值的經典測量方法,這兩種實驗至今仍然被藥理學研究采用。但這兩種方法都有一些局限性,沒有在痛覺過敏的行為反應研究中得到運用。


足底測試代表了一種先進的實驗方法,它集合了疼痛過敏測試的優點

· 實驗時,受試動物無拘束,可自由活動;

· 實驗數據記錄是儀器自動感應完成的,無需人為判斷和記錄;

· 通過聚焦紅外光源于動物足底,按下開關,等待動物縮回受測足爪,儀器自動記錄紅外光強度和持續時間;

· 紅外光源設置了一個特殊的過濾器,能夠過濾掉可見光譜,防止可見光干擾動物,影響實驗結果;

· 帶自檢裝置:反饋電路能夠進行自檢,能有效避免錯誤的實驗環境;

· 實驗數據會顯示在液晶屏上,數據可導入U盤,或通過USB數據線導入至電腦。

· 文獻引用量超過2000足底熱刺激設備

· 數據在前板上顯示,可以通過USB傳送到電腦上,USB儲存設備和軟件都包含在標準的配件包里,

型號:37370


產品特點:
· 可自動或手動記錄爪縮回時間,不需要視覺評分,無差錯,測量精確
· 觸摸屏控制所有功能和結果查看
· 配備USB接口,可單獨工作,也可連接電腦使用
· 帶數據統計軟件,可將CSV文件從直接導出到USB
· 爪縮回潛伏期的分辨率為0.1s
· 紅外光強度01-99 級間可調
· 可選配紅外熱輻射校準儀用于校準紅外光源
· 6只大鼠或12只小鼠同時進行實驗



主機及測試光源


主要參數:

· 操作方式:按鍵
· 數據讀取:液晶屏顯示
· 紅外光強度:01-99 級間可調
· 時間分辨率:0.1s
· 紅外燈泡:Halogen "Bellaphot", Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W
· 數據轉移:閃存
· 電源:85-264 VAC, 50-60Hz
· 工作溫度:15°- 30°C
· 噪音:< 70dB
· 校準:紅外輻射計
· 規格:85x40x35 cm
· 鼠籠:尺寸20x20x14cm,數量3個
· 凈重:13.0kg
 


可選配Durham大鼠束縛器,配合足底熱點儀,用于大鼠下頜部三叉神經痛測試。


刺激強度值(紅外熱輻射值)對照表

(單位:mW/cm2

刺激強度010203040506070809099
標準值輻射值21±167±10103±10135±7165±7190±1219±7245±7270±10295±10317±20


主要配置清單


37370

足底測試儀 (Hargreaves test), 標準套件

37370-001

控制主機

37370-002

探頭

37000-003

工作臺

37370-327

支架

37000-006

模塊式動物圍欄 (No. 3 Modules M-S 085)

37370-005

Framed Glass Pane

E-AU 041

存儲卡,包含以下

37370-302 安裝說明

52050-10 CUB 數據采集軟件包

52010-323

USB 數據線

備件

E-HR 002

替換燈泡 (Halogen "Bellaphot", Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W)



選配:

37300

紅外熱輻射校準儀

37370-278

附加實驗原件,包括玻璃面板和動物束縛器

37100

大鼠束縛器,用于測試下頜部三叉神經痛

37000-145

面板內嵌式打印機

57145

微型打印機


可選配:紅外熱輻射測量儀


方法學文獻:

1.Fri??i?, Jasna, et al. "The complement system drives local inflammatory tissue priming by metabolic reprogramming of synovial fibroblasts." Immunity 54.5 (2021): 

1002-1021. doi:10.1016/j.immuni.2021.03.003

2.Boyd, Jacob T., et al. "Elevated dietary ω-6 polyunsaturated fatty acids induce reversible peripheral nerve dysfunction that exacerbates comorbid pain conditions." 

Nature metabolism 3.6 (2021): 762-773.doi: 

3.Defaye, Manon, et al. "The neuronal tyrosine kinase receptor ligand ALKAL2 mediates persistent pain." The Journal of clinical investigation 132.12 (2022).doi: 

10.1172/JCI154317 

4.Liu, Shijia, et al. "Divergent brainstem opioidergic pathways that coordinate breathing with pain and emotions." Neuron 110.5 (2022): 857-873. doi:10.1016/j.neuron.2021.11.029

5.Powell, Rasheen, et al. "Inhibiting endocytosis in CGRP+ nociceptors attenuates inflammatory pain-like behavior." Nature Communications 12.1 (2021): 5812. 

10.1038/s41467-021-26100-6

6.Cheong, Hogyun, et al. "Sutureless neurorrhaphy system using a macrophage-polarizing in situ visible light-crosslinkable adhesive protein hydrogel for functional 

nerve regeneration." Chemical Engineering Journal 445 (2022): 136641. doi:10.1016/j.cej.2022.136641

7.Llorca-Torralba, Meritxell, et al. "Pain and depression comorbidity causes asymmetric plasticity in the locus coeruleus neurons." Brain 145.1 (2022): 154-167. doi: 

10.1093/brain/awab239

8.Sohn, Hee Su, et al. "Tolerogenic nanoparticles induce type II collagen?specific regulatory T cells and ameliorate osteoarthritis." Science Advances 8.47 (2022): 

eabo5284.doi: 10.1126/sciadv.abo5284

9.Fotio, Yannick, et al. "NAAA-regulated lipid signaling governs the transition from acute to chronic pain." Science advances 7.43 (2021): eabi8834.doi:10.1126/sciadv.abi8834 

10.Kolbinger, Anja, et al. "Eosinophil‐derived IL‐4 is necessary to establish the inflammatory structure in innate inflammation." EMBO Molecular Medicine 15.2 

(2023): e16796.doi:


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